相關(guān)介紹:
鏈霉親和素瓊脂糖凝膠FF是一種將鏈霉親和素(Streptavidin)鍵合在瓊脂糖凝膠微球上形成的生物親和層析分離介質(zhì)。該產(chǎn)品保留了瓊脂糖極好的親水性及大網(wǎng)架結(jié)構(gòu),與生物活性大分子有很好的相容性,具有載量高,非特異性吸附少,流速快等特點(diǎn)。
鏈霉親和素瓊脂糖凝膠FF是基于鏈霉親和素與生物素的特異性結(jié)合實現(xiàn)從生物樣品或混合物中分離純化生物素或生物素化的抗原、抗體、核酸等物質(zhì)。由于鏈霉親和素與生物素的結(jié)合力非常強(qiáng),一般需要變性條件下才能將其分離,這容易導(dǎo)致樣品或配基失活。這個特性可用于抗原與抗體的分離,如將生物素化的抗體結(jié)合在凝膠上,然后利用抗原抗體的親和特性純化無生物素化的抗原,抗原洗脫時抗體不會被洗脫。反之亦可。
另外,鏈霉親和素與2-亞氨基生物素(2-iminobiotin)的結(jié)合相對生物素較弱,在pH 9.5 ~ 11.0時容易結(jié)合,pH 4.0時不需要變性劑即可洗脫,一般不影響樣品的活性和凝膠的活性。
技術(shù)指標(biāo):
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基質(zhì)
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4%瓊脂糖凝膠微球
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配基
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鏈霉親和素
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配基密度
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~5 mg/ml
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填料粒徑
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60 ~ 180 μm
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最大流速
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800 cm/h
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推薦流速
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15 ~ 100 cm/h
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pH穩(wěn)定性
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短時間pH 2 ~ 11;長時間pH 4 ~ 9
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耐反壓
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0.3 MPa
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載量
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≥300 nmol/ml生物素
≥6 mg/ml生物素化蛋白
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使用方法:
1 推薦緩沖液
1.1 純化生物素或生物素化物質(zhì)
結(jié)合緩沖液:20 mM NaH2PO4, 150 mM NaCl, pH 7.4
洗脫緩沖液:8 M 鹽酸胍,pH 1.5
1.2 純化2-亞氨基生物素或2-亞氨基生物素標(biāo)記的物質(zhì)
結(jié)合緩沖液:50 mM 碳酸銨,500 mM NaCl,pH 10.0
洗脫緩沖液:50 mM 乙酸銨,500 mM NaCl,pH 4.0
1.3 純化抗原或抗體
結(jié)合緩沖液:20 mM NaH2PO4,150 mM NaCl,pH 7.4
洗脫緩沖液:100 mM 甘氨酸-鹽酸,pH 3.0
注:用于生物素化的抗體純化未生物素化的抗原(或生物素化的抗原純化未生物素化的抗體)有2種方法,①可先在游離狀態(tài)下抗原與抗體結(jié)合,然后當(dāng)樣品純化即可;②也可以將生物素化的抗體(或抗原)先結(jié)合柱上,然后對應(yīng)的未生物素化的抗原(或抗體)當(dāng)樣品純化。
2 樣品準(zhǔn)備
上柱的樣品應(yīng)盡量保持與結(jié)合緩沖液一致。通?捎猛肝、超濾、稀釋等方法處理樣品。并且上柱前應(yīng)過0.45 μm濾膜或高速離心去除不溶物。
3 樣品純化
3.1 取適量的鏈霉親和素瓊脂糖凝膠FF裝入合適的層析柱中,用結(jié)合緩沖液平衡5個柱體積,建議流速為100 cm/h。
3.2 將準(zhǔn)備好的樣品緩慢上柱,為保證樣品與鏈霉親和素充分結(jié)合,應(yīng)控制好上樣流速,建議流速為15 ~ 50 cm/h。
3.3 上樣后用結(jié)合緩沖液平衡10個柱體積以上,或平衡至基線,洗去雜質(zhì),推薦流速為100 cm/h。
3.4 用洗脫緩沖液洗10 ~ 20個柱體積,建議流速為100 cm/h,收集的洗脫液應(yīng)立即調(diào)節(jié)pH至穩(wěn)定范圍,并根據(jù)需要置換緩沖液。
3.5 洗脫目的蛋白后的柱子應(yīng)立即用中性的結(jié)合緩沖液平衡,并用20%乙醇保存柱子,或進(jìn)行下一次純化。